Recomendaciones para la identificación de Candida auris
Notificación
En los establecimientos de atención médica donde se presuma que un paciente tiene una infección por C. auris se debe contactar inmediatamente a las autoridades de salud pública estatales o locales y a los CDC (candidaauris@cdc.gov) para obtener orientación.
Diagnóstico de laboratorio
¿Cuándo se debe presumir que un paciente tiene una infección por C. auris?
La C. auris puede ser identificada erróneamente con otros microorganismos cuando se usan métodos bioquímicos tradicionales para la identificación de hongos, como los sistemas BD Phoenix, MicroScan y VITEK 2 YST. Se debe presumir la existencia de C. auris cuando una cepa aislada se identifica como Candida haemulonii, porque esta es la especie con la que con más frecuencia se identifica erróneamente a la C. auris.
También se debe presumir la existencia de C. auris cuando una cepa aislada se identifica de la siguiente manera:
- Se notifica simplemente como una especie del género Candida, después de haber usado un método validado para la de identificación de levaduras Candida, especialmente cuando una infección no responde a la terapia antimicótica.
- Como Rhodotorula glutinis por API 20C, y el color rojo característico de la glutinis no esté presente en el medio de cultivo.
- When a patient has had an overnight stay in a healthcare facility outside the United States in the previous one year in a country with documented C. auris transmission, especially those countries to which U.S. cases have been linked (India, Pakistan, South Africa, and Venezuela). Colonization for longer than a year has been identified among some C. auris patients; therefore hospitals might also consider determining the species for Candida isolated from patients with more remote exposure to healthcare abroad.
When to suspect Candida auris
C. auris can be misidentified as a number of different organisms when using traditional biochemical methods for yeast identification such as VITEK 2 YST, API 20C, BD Phoenix yeast identification system, and MicroScan.
The table below summarizes common misidentifications based on the identification method used. If any of the species listed below are identified, or if species identity cannot be determined, further characterization using appropriate methodology (see “How to identify Candida auris“) should be sought.
| Identification Method | Organism C. auris can be misidentified as |
|---|---|
| Vitek 2 YST |
Candida haemulonii Candida duobushaemulonii |
| API 20C |
Rhodotorula glutinis (characteristic red color not present) Candida sake |
| BD Phoenix yeast identification system |
Candida haemulonii Candida catenulata |
| Microscan |
Candida famata Candida guilliermondii* Candida lusitaniae* Candida parapsilosis* |
*C.. guilliermondii, C. lusitaniae, and C. parapsilosis generally make hyphae or pseudohyphae on cornmeal agar. If hyphae or pseudohyphae are not present on cornmeal agar, this should raise suspicion for C. auris as C. auris typically does not make hyphae or pseudohyphae. However, some C. auris isolates have formed hyphae or pseudohyphae. Therefore, it would be prudent to consider any C. guilliermondii, C. lusitaniae, and C. parapsilosis isolates identified on MicroScan as possible C. auris isolates and forward them for further identification.
Please note that this list is based on current knowledge about C. auris misidentification. It may change from time to time as we learn more about misidentification of C. auris.
An increase in infections due to unidentified Candida species in a patient care unit, including increases in isolation of Candida from urine specimens, should also prompt suspicion for C. auris, since C. auris can be transmitted in healthcare settings.
The appearance and color of C. auris colonies in culture may aid in species identification, but cannot be used as the only identification method for C. auris since C. auris cannot be distinguished from other more common species of Candida without using other methods described in the section below. C. auris is a budding yeast, which almost never forms short pseudohyphae and does not form germ tubes. Some strains form aggregates of cells, whereas others do not. Unlike most other Candida species, it grows well at 40–42º C on CHROMagar, C. auris colonies appear white, pink, or red, and some colonies cannot be distinguished from C. glabrata.
Laboratories with capability to characterize isolates further are encouraged to do so; CDC and some state and regional public health laboratories can also assist with characterizations when local capacity does not exist. All confirmed isolates of C. auris should be reported to local and state public health officials and CDC at candidaauris@cdc.gov.
¿Cómo se puede identificar la C. auris?
Con los dispositivos de diagnóstico que se basan en la desorción/ionización mediante láser asistida por matriz, con un analizador de tiempo de vuelo acoplado (MALDI-TOF), se puede diferenciar a la C. auris de otras especies del género Candida, pero, no en todos los dispositivos MALDI-TOF se incluye en la base de datos de referencia la información que permita la detección de esta especie. En la actualidad, la identificación precisa de la C. auris se puede realizar con el uso de dispositivos MALDI-TOF de las marcas: Vitek MS y Bruker Biotyper, utilizando las bases de datos “exclusivas para investigación”.
Los métodos moleculares basados en la secuenciación de la región D1-D2 del ADN ribosómico 28S pueden también identificar la C. auris.
A medida que la C. auris se vaya reconociendo cada vez más, es posible que se pueda identificar con las versiones actualizadas de otras plataformas para la identificación de hongos. Consulte al fabricante del instrumento para obtener más información. En caso de duda, envíe los aislamientos sospechosos de ser C. auris a los CDC por medio de los laboratorios estatales de salud pública. All confirmed isolates of C. auris should be reported to local and state public health officials and to CDC at candidaauris@cdc.gov.
¿Cuándo se deberían hacer las pruebas de sensibilidad a los fármacos antimicóticos a la C. auris y cómo deberían interpretarse los resultados?
Se les debería hacer pruebas de sensibilidad a los fármacos antimicóticos a todas las cepas aisladas de C. auris. Debido a que no se han establecido específicamente los valores críticos de sensibilidad para esta especie, estos se definen con base en los valores críticos establecidos para otras especies estrechamente relacionadas del género Candida y en la opinión de expertos.
La correlación entre los valores críticos microbiológicos y los resultados clínicos se desconoce en la actualidad. Por esta razón, la información que sigue a continuación debe considerarse como una guía general y no como valores críticos de sensibilidad definitivos. Tenga en cuenta que si se halla una elevada concentración inhibitoria mínima (MIC, por sus siglas en inglés) de un fármaco antimicótico, esto no debería excluir necesariamente su uso, especialmente si el uso de otros fármacos antimicóticos no ha resultado eficaz para el paciente.
| Clase/fármaco | Valores críticos tentativos de MIC (µg/mL) | Comentario |
|---|---|---|
| Triazoles | ||
| Fluconazol | ≥32 | La concentración inhibitoria mínima (MIC) modal al fluconazol entre las cepas aisladas que se analizaron en los CDC fue ≥ 256; las colonias aisladas con una MIC ≥ 32 mostraron tener una mutación en la resistencia en el gen Erg11, lo cual hacía que fuera improbable que respondieran al fluconazol. |
| El voriconazol y otros triazoles de segunda generación | N/C | Considere usar la sensibilidad al fluconazol como un sustituto de la evaluación de sensibilidad a los triazoles de segunda generación. Sin embargo, las cepas aisladas que son resistentes al fluconazol ocasionalmente pueden responder a otros triazoles. La decisión de tratar al paciente con otro triazol se deberá tomar según el caso particular. |
| Polyenes | ||
| Anfotericina B | ≥2 | Un análisis farmacocinético/farmacodinámico reciente de la C. auris en un modelo de ratón de la infección indicó que, bajo una dosis estándar, el valor crítico de la anfotericina B debe ser de 1 µg/mL o 1.5 µg/mL, similar al que se ha determinado para otras especies del género Candida. Por lo tanto, las cepas aisladas con una MIC ≥ 2 µg/mL ahora deben ser consideradas resistentes. Si se usa un Etest para la anfotericina B y se determina una MIC de 1.5 µg/mL, ese valor debe ser redondeado a 2 µg/mL |
| Equinocandinas | ||
| Anidulafungina | ≥ 4 | Los valores críticos tentativos se basan en la distribución modal de las MIC de las equinocandinas que se obtuvieron de aproximadamente 100 cepas aisladas provenientes de distintas ubicaciones geográficas. |
| Caspofungina | ≥ 2 | |
| Micafungina | ≥ 4 | |
Based on these MIC breakpoints, some C. auris isolates from outside of the United States have been found to be resistant to all three classes of antifungal drugs, and many isolates are frequently resistant to multiple classes of drugs. In the United States, about 90% of C. auris isolates have been resistant to fluconazole, 30% have been resistant to amphotericin B, and a 5% have been resistant to echinocandins. These proportions may change as isolates are tested.
Vigilancia de Candida auris
Todos los laboratorios, especialmente los laboratorios que prestan servicios a centros de salud donde se hayan detectado casos de C. auris, se les sugiere hacer lo siguiente:
- Revisar los registros históricos de los resultados del laboratorio de microbiología (desde el año 2015, si es posible) para identificar casos confirmados o sospechosos de C. auris (consulte: ¿Cuándo se debe presumir que un paciente tiene una infección por C. auris?).
- Llevar a cabo una vigilancia prospectiva para identificar casos de C. auris.
- Considerar realizar pruebas de tamizaje a los contactos cercanos de los pacientes con C. auris, para detectar la presencia de colonización.